Controle de qualidade na análise de DBO: guia prático

O controle de qualidade na análise de DBO é indispensável para verificar se o consumo de oxigênio observado nos frascos representa efetivamente a atividade biológica da amostra. Como a determinação depende da ação de microrganismos durante um período de incubação, pequenas variações na água de diluição, na semente, na temperatura, nas diluições ou na medição do oxigênio dissolvido podem alterar o resultado.

Não basta, portanto, medir o oxigênio dissolvido inicial, incubar os frascos e realizar a leitura final. O laboratório precisa demonstrar que todo o sistema analítico apresentou desempenho adequado.

Essa avaliação envolve controles como:

• branco da água de diluição;
• controle da semente;
• fator de correção da semente;
• solução-padrão de glicose e ácido glutâmico;
• diluições da amostra;
• duplicatas;
• calibração do sistema de oxigênio dissolvido;
• controle da incubação;
• registros e rastreabilidade do lote analítico.

Quando esses elementos são avaliados em conjunto, o laboratório consegue identificar falhas, investigar resultados atípicos e decidir se os dados podem ser liberados.

Por que a análise de DBO exige tantos controles?

A DBO5 é um ensaio biológico e definido pelo método. O resultado depende da interação entre três componentes:

1. Matéria biodegradável disponível.
2. Microrganismos ativos.
3. Oxigênio dissolvido suficiente.

Também precisam permanecer controladas as condições que permitem a atividade microbiológica, como temperatura, tempo de incubação, nutrientes, pH e ausência de substâncias inibidoras.

Diferentemente de uma determinação instrumental direta, a DBO5 não mede isoladamente uma molécula específica. Ela estima o oxigênio consumido em condições padronizadas durante cinco dias.

Por isso, a consistência da execução tem influência direta sobre o resultado.

Um valor numericamente plausível não é necessariamente um resultado válido. Antes da liberação, o laboratório deve verificar se:

• a água de diluição estava adequada;
• a semente apresentou atividade;
• o padrão de controle respondeu dentro do esperado;
• pelo menos uma diluição da amostra atendeu aos critérios;
• o oxigênio dissolvido permaneceu em faixa mensurável;
• a incubação ocorreu conforme o procedimento;
• os registros permitem reconstruir a análise.

Principais controles da análise de DBO

Os limites e as frequências devem ser estabelecidos pelo método utilizado, pelos requisitos de acreditação e pelo procedimento operacional do laboratório.

Branco da água de diluição

O branco é preparado com a água de diluição e os nutrientes utilizados no ensaio, mas sem amostra e, em sua configuração convencional, sem adição de semente.

Sua função é verificar se o próprio sistema de preparação está provocando consumo de oxigênio.

Uma depleção elevada no branco pode estar relacionada a:

• água de qualidade inadequada;
• contaminação microbiológica;
• nutrientes contaminados ou deteriorados;
• vidraria insuficientemente limpa;
• resíduos de detergentes;
• contaminação durante a preparação;
• armazenamento inadequado da água;
• materiais que exercem demanda de oxigênio.

Em procedimentos baseados no Standard Methods 5210 B, é comum adotar como referência uma depleção inferior a 0,2 mg/L após cinco dias, preferencialmente ainda menor. Esse critério também aparece em documentos de controle de qualidade associados ao método e no procedimento de aplicação do PolySeed.

O resultado do branco não deve ser tratado apenas como uma informação adicional. Quando o consumo ultrapassa o limite estabelecido, todo o lote precisa ser avaliado.

O que investigar quando o branco apresenta depleção elevada?

A investigação pode começar pelos seguintes pontos:

1. Verificar a origem e a qualidade da água utilizada.
2. Avaliar a validade e o armazenamento das soluções de nutrientes.
3. Revisar a limpeza dos frascos de DBO e demais materiais.
4. Confirmar se houve contaminação durante a aeração.
5. Inspecionar mangueiras, difusores e recipientes de preparação.
6. Verificar o tempo e as condições de armazenamento da água.
7. Preparar um novo branco com materiais controlados.
8. Comparar o comportamento de diferentes lotes de reagentes.

A depleção do branco precisa ser investigada antes que o problema seja atribuído às amostras.

Controle da semente

A semente fornece os microrganismos responsáveis pela degradação biológica quando a amostra não apresenta uma população suficiente ou adequada.

Entretanto, o próprio inóculo também contém matéria que consome oxigênio. Essa contribuição não pertence à amostra e precisa ser determinada para que seja aplicada a correção correspondente.

O controle da semente permite avaliar:

• se os microrganismos estão ativos;
• se o volume utilizado é adequado;
• quanto oxigênio é consumido pelo próprio inóculo;
• se a contribuição da semente permanece consistente;
• se existe diferença relevante entre preparações ou lotes.

Normalmente, são preparados frascos com diferentes volumes da solução de semente. A partir da depleção observada, calcula-se a contribuição correspondente ao volume adicionado às amostras.

O que é o fator de correção da semente?

O fator de correção da semente, frequentemente identificado como SCF — Seed Control Factor — representa a parcela da depleção de oxigênio atribuída ao inóculo presente no frasco da amostra.

De forma simplificada, a correção considera:

• o oxigênio dissolvido inicial do controle da semente;
• o oxigênio dissolvido final;
• o volume de semente utilizado no controle;
• o volume de semente adicionado à amostra.

A correção não deve ser estimada sem a realização do controle. Também não é adequado utilizar indefinidamente um valor histórico fixo, porque a atividade microbiológica pode variar entre preparações, lotes e condições de uso.

No procedimento do PolySeed, a contribuição da semente no frasco de análise é indicada na faixa de 0,6 a 1,0 mg/L. O laboratório deve confirmar o critério aplicável ao método e ao procedimento que utiliza.

O que um controle da semente inadequado pode indicar?

Um consumo muito baixo pode estar relacionado a:

• baixa atividade microbiológica;
• reidratação incompleta;
• tempo insuficiente de ativação;
• temperatura inadequada;
• presença de substâncias inibidoras;
• erro no volume adicionado;
• armazenamento inadequado do inóculo;
• solução utilizada após o período estabelecido.

Um consumo excessivo pode indicar:

• quantidade elevada de semente;
• transferência do material carreador para os frascos;
• contaminação da preparação;
• erro de pipetagem;
• contribuição orgânica excessiva da fonte de inóculo;
• cálculo incorreto do fator de correção.

O objetivo não é maximizar a atividade da semente, mas obter uma contribuição controlada, mensurável e compatível com o procedimento.

Controle com glicose e ácido glutâmico

A solução de glicose e ácido glutâmico, conhecida pela sigla GGA, é utilizada para verificar o desempenho conjunto das principais etapas do ensaio.

A glicose é facilmente biodegradável, mas pode apresentar deficiência de nitrogênio para determinadas populações microbianas. O ácido glutâmico fornece uma fonte adicional de carbono e nitrogênio. Utilizados em conjunto, os dois compostos formam um substrato de referência para o teste.

O controle com GGA ajuda a avaliar:

• qualidade da água de diluição;
• atividade da semente;
• preparo das soluções;
• disponibilidade de nutrientes;
• execução das diluições;
• medição de oxigênio dissolvido;
• condições de incubação;
• desempenho geral do ensaio.

Para a DBO5 convencional, muitos procedimentos adotam como referência 198 ± 30,5 mg/L. Entretanto, o laboratório deve utilizar o limite previsto na edição do método adotado, em seu programa de acreditação ou em seus próprios limites estatísticos formalmente estabelecidos.

No caso da CBOD5, o uso do inibidor de nitrificação pode exigir critérios específicos. O laboratório não deve aplicar automaticamente o mesmo limite sem verificar o método e o procedimento correspondente.

O GGA comprova que todas as amostras estão válidas?

Não.

Um resultado satisfatório de GGA demonstra que o sistema conseguiu processar adequadamente um substrato conhecido nas condições do ensaio. Isso não garante que uma amostra industrial complexa esteja livre de interferências.

A amostra ainda pode apresentar:

• toxicidade;
• cloro residual;
• pH inadequado;
• compostos de difícil biodegradação;
• elevada salinidade;
• deficiência de nutrientes;
• concentração incompatível com as diluições selecionadas;
• microrganismos adaptados a uma matriz específica.

Por isso, o GGA deve ser interpretado em conjunto com os demais controles e com o comportamento das diluições da amostra.

Como interpretar um resultado de GGA fora do limite?

Um resultado abaixo do limite pode estar associado a:

• semente com baixa atividade;
• quantidade insuficiente de inóculo;
• água de diluição inadequada;
• deficiência de nutrientes;
• erro no preparo do padrão;
• incubação em temperatura incorreta;
• tempo de incubação insuficiente;
• problemas na medição de oxigênio dissolvido;
• presença de substâncias inibidoras.

Um resultado acima do limite pode indicar:

• excesso de semente;
• contaminação do padrão;
• erro de concentração;
• erro volumétrico;
• contribuição inadequada da semente;
• tempo de incubação superior ao previsto;
• falha no cálculo.

Quando o controle não atende ao critério, o laboratório deve investigar a causa, documentar a ocorrência e avaliar o impacto sobre as amostras do lote.

Critérios para validar as diluições da amostra

A escolha das diluições é uma das etapas mais críticas da análise.

O frasco precisa conter quantidade suficiente de amostra para produzir uma depleção mensurável, mas também deve conservar oxigênio dissolvido até o final da incubação.

Em procedimentos associados ao Standard Methods 5210 B, uma diluição é normalmente considerada adequada quando apresenta:

• depleção de oxigênio dissolvido de pelo menos 2,0 mg/L; e
• concentração residual de oxigênio dissolvido de pelo menos 1,0 mg/L ao final da incubação.

Esses critérios são apresentados, por exemplo, nas orientações técnicas sobre DBO do Wisconsin Department of Natural Resources.

Por que a depleção mínima é necessária?

Quando a diferença entre as leituras inicial e final é muito pequena, a incerteza da medição passa a representar uma parcela elevada do resultado.

Uma depleção insuficiente pode ocorrer quando:

• o volume de amostra é muito pequeno;
• a amostra apresenta baixa carga biodegradável;
• existe toxicidade;
• a semente está inativa;
• a incubação foi inadequada;
• houve erro na medição inicial ou final.

Por que o oxigênio residual deve ser preservado?

Quando o oxigênio é totalmente ou quase totalmente consumido, não é possível saber quanto teria sido utilizado se o frasco continuasse em condição aeróbia durante todo o período.

Esse problema pode ocorrer quando:

• o volume de amostra é excessivo;
• a DBO foi subestimada no planejamento;
• a matriz apresenta carga orgânica elevada;
• houve nitrificação significativa;
• a diluição foi preparada incorretamente.

Para reduzir o risco de invalidar todas as determinações, o laboratório deve preparar uma série de diluições baseada no histórico da matriz e na concentração esperada.

O que fazer quando mais de uma diluição é válida?

Quando duas ou mais diluições atendem aos critérios, o laboratório precisa verificar a coerência entre os resultados calculados.

Valores próximos fortalecem a evidência de que a faixa de diluição foi adequada.

Diferenças relevantes podem indicar:

• falta de homogeneização;
• erro volumétrico;
• distribuição irregular de sólidos;
• toxicidade mais intensa nas diluições concentradas;
• quantidade inconsistente de semente;
• erro na correção;
• variabilidade na leitura de oxigênio dissolvido.

O procedimento operacional deve estabelecer como os resultados válidos serão selecionados, combinados ou reportados.

Escolher apenas o valor mais conveniente, sem um critério previamente documentado, compromete a rastreabilidade.

Duplicatas e avaliação da repetibilidade

A preparação de duplicatas permite avaliar a repetibilidade do ensaio dentro do mesmo lote analítico.

Diferenças elevadas podem estar relacionadas a:

• homogeneização insuficiente;
• amostra com sólidos sedimentáveis;
• pipetagem inconsistente;
• volumes diferentes de semente;
• bolhas nos frascos;
• variação entre leituras de oxigênio dissolvido;
• contaminação de um dos frascos;
• troca de identificação;
• vedação inadequada.

A frequência e o limite de aceitação das duplicatas devem ser definidos pelo método, pelo programa de qualidade ou pelo procedimento do laboratório.

Para matrizes muito heterogêneas, a avaliação precisa considerar que parte da diferença pode ter origem na própria distribuição da amostra. Mesmo assim, o laboratório deve demonstrar que a preparação foi suficientemente controlada.

Controle do oxigênio dissolvido

Toda a determinação de DBO depende da diferença entre duas medições de oxigênio dissolvido. Qualquer erro nessas leituras é transferido diretamente para o resultado.

O sistema de medição precisa ser verificado antes do início das análises.

Os principais cuidados incluem:

• calibração conforme as instruções do fabricante;
• estabilização adequada da sonda;
• compensação de temperatura;
• compensação de pressão atmosférica, quando aplicável;
• inspeção da membrana ou do sensor;
• verificação do eletrólito, nos sensores que o utilizam;
• ausência de bolhas;
• limpeza correta;
• tempo de resposta adequado;
• registro da calibração;
• verificação do desempenho entre as leituras iniciais e finais.

Uma sonda que demora a estabilizar, apresenta deriva ou responde de maneira diferente entre os frascos pode introduzir variações relevantes.

Cuidados durante a leitura

A medição deve ser realizada de maneira uniforme entre todos os frascos.

O analista precisa evitar:

• introdução de bolhas;
• agitação excessiva;
• aquecimento da amostra;
• contaminação entre frascos;
• contato inadequado da sonda;
• leitura antes da estabilização;
• demora excessiva fora da incubadora;
• alteração do volume do frasco.

Quando o método de Winkler é utilizado, os reagentes, a titulação e a padronização também precisam integrar o controle de qualidade.

Controle da incubação

Os frascos de DBO5 devem permanecer incubados por cinco dias nas condições previstas pelo método, normalmente a 20 °C, protegidos da luz.

As orientações técnicas relacionadas ao Standard Methods 5210 B frequentemente consideram um período de cinco dias com tolerância de seis horas. O laboratório deve confirmar os limites aplicáveis ao procedimento adotado.

Durante a incubação, é necessário controlar:

• temperatura;
• duração;
• ausência de luz;
• vedação dos frascos;
• posição e identificação;
• integridade dos recipientes;
• interrupções no fornecimento de energia;
• abertura da incubadora;
• distribuição dos frascos.

A exposição à luz pode favorecer atividade fotossintética e produção de oxigênio. Já variações de temperatura alteram a atividade microbiológica e a solubilidade do oxigênio.

Como monitorar a temperatura?

A incubadora deve possuir sistema de medição adequado e rastreável.

Os registros precisam permitir verificar:

• temperatura no início da incubação;
• comportamento ao longo dos cinco dias;
• ocorrência de desvios;
• duração do desvio;
• lotes afetados;
• ação tomada pelo laboratório.

Um valor observado apenas no momento de retirar os frascos não demonstra, isoladamente, que a temperatura permaneceu controlada durante todo o período.

Controle da água de diluição

A água de diluição fornece o meio necessário para manter a atividade microbiológica durante o ensaio.

Ela deve apresentar:

• qualidade compatível com o método;
• oxigênio dissolvido suficiente;
• nutrientes adequados;
• ausência de substâncias tóxicas;
• pH apropriado;
• baixa demanda de oxigênio;
• temperatura ajustada ao ensaio.

Normalmente, são adicionadas soluções nutrientes contendo componentes como tampão fosfato, magnésio, cálcio e ferro, conforme o método adotado.

Água deionizada ou destilada sem a adição dos nutrientes previstos não deve ser tratada automaticamente como água de diluição pronta.

No preparo do PolySeed, por exemplo, o fabricante orienta a utilização de água de diluição preparada conforme o método, e não de água deionizada isoladamente.

Controle do inóculo comercial

O uso de um inóculo padronizado pode reduzir a variabilidade associada a fontes locais de semente. Entretanto, o produto continua sujeito a controles de preparação e desempenho.

Ao utilizar o PolySeed para DBO5, o laboratório deve controlar:

• lote e validade;
• condições de armazenamento;
• volume da água de diluição;
• temperatura de preparação;
• tempo de reidratação e aeração;
• período de decantação;
• separação do material carreador;
• agitação da solução;
• volume adicionado aos frascos;
• tempo entre a preparação e o uso;
• controle da semente;
• resposta do GGA.

A cápsula não deve ser adicionada diretamente a cada frasco de amostra. Primeiro é preparada uma solução de inóculo; depois, alíquotas controladas são distribuídas.

O material utilizado como suporte das culturas deve ser decantado e não deve ser transferido para os frascos.

Para análises de CBOD5, o PolySeed NX reúne a fonte microbiológica e um aditivo para controlar a nitrificação. Nesse caso, o laboratório também precisa verificar a compatibilidade do produto com o método de CBOD5 utilizado.

A escolha entre os dois produtos é detalhada no artigo PolySeed ou PolySeed NX: qual inóculo escolher?.

Controle da amostra antes do ensaio

A qualidade analítica começa antes da montagem dos frascos.

O laboratório precisa avaliar:

• identificação;
• data e horário da coleta;
• temperatura de recebimento;
• tempo transcorrido até a análise;
• condição do recipiente;
• presença de cloro residual;
• pH;
• necessidade de neutralização;
• homogeneidade;
• possibilidade de toxicidade;
• necessidade de semeadura;
• concentração esperada;
• histórico da matriz.

Amostras biologicamente ativas podem sofrer alterações durante o armazenamento. Por isso, o tempo entre coleta e análise deve ser minimizado, respeitando o método e os requisitos aplicáveis.

Quando a amostra contém cloro residual, o oxidante precisa ser neutralizado conforme o procedimento. Caso contrário, os microrganismos podem ser inibidos e o resultado pode ficar artificialmente baixo.

A correção de pH também deve ser realizada com cuidado para não introduzir volumes ou substâncias capazes de alterar indevidamente o ensaio.

Como avaliar o lote antes de liberar os resultados?

A avaliação pode seguir uma sequência lógica.

1. Verificar os registros iniciais

Confirmar:

• identificação das amostras;
• condições de recebimento;
• preparo da água;
• preparo da semente;
• lotes dos reagentes;
• calibração do medidor;
• horários de início.

2. Avaliar o branco

Verificar se a depleção da água de diluição permaneceu dentro do limite.

3. Avaliar o controle da semente

Confirmar a atividade do inóculo e calcular a correção aplicável às amostras.

4. Avaliar o GGA

Verificar se o resultado atende ao critério adotado pelo laboratório.

5. Avaliar a incubação

Confirmar o tempo, a temperatura, a proteção contra luz e a ausência de ocorrências capazes de afetar o lote.

6. Selecionar as diluições válidas

Verificar a depleção mínima, o oxigênio residual e a coerência entre os resultados.

7. Avaliar duplicatas

Comparar os resultados e aplicar o critério de repetibilidade previsto.

8. Revisar cálculos e correções

Confirmar volumes, fatores de diluição, correção da semente, unidades e arredondamento.

9. Investigar desvios

Determinar a causa provável, avaliar o impacto e documentar a decisão.

10. Autorizar ou restringir a liberação

A liberação deve considerar o conjunto das evidências, e não apenas o valor calculado para a amostra.

Tabela de investigação de resultados de controle

Essa tabela funciona como ponto de partida. A investigação deve considerar o histórico do laboratório e as características específicas de cada matriz.

Registros necessários para garantir a rastreabilidade

Os registros devem permitir reconstruir a análise desde o recebimento da amostra até a emissão do resultado.

É recomendável documentar:

• identificação das amostras;
• datas e horários de coleta, recebimento e início;
• temperatura de recebimento;
• condições de preservação;
• pH e tratamentos realizados;
• volumes e diluições;
• origem, lote e validade da semente;
• preparo da solução de inóculo;
• volumes de semente utilizados;
• lotes das soluções nutrientes;
• identificação dos frascos;
• resultados iniciais e finais de OD;
• resultados do branco, GGA e controles da semente;
• registros da incubadora;
• calibração do sistema de OD;
• cálculos;
• diluições aceitas e rejeitadas;
• desvios e ações corretivas;
• identificação dos analistas;
• revisão e aprovação.

Planilhas automáticas podem reduzir erros de cálculo, mas precisam ser verificadas e controladas. A automação não substitui a avaliação técnica dos dados.

Frequência dos controles

A frequência deve ser definida pelo método, pelo programa de acreditação e pelo sistema de gestão do laboratório.

Em geral, os controles críticos são processados por lote analítico. Dependendo do procedimento, o lote pode ser delimitado pelo conjunto de amostras preparadas com a mesma água de diluição, a mesma solução de semente e as mesmas condições de incubação.

Alterações como as seguintes podem justificar um novo conjunto de controles:

• nova preparação de água de diluição;
• nova solução de semente;
• troca de lote do inóculo;
• mudança de analista;
• interrupção prolongada da rotina;
• manutenção do equipamento;
• ocorrência de desvio;
• alteração do procedimento.

A definição de lote precisa estar documentada para impedir que controles de uma preparação sejam utilizados para justificar resultados produzidos em condições diferentes.

Controle de qualidade em DBO5 e CBOD5

Os fundamentos de qualidade são semelhantes nos dois ensaios, mas existe uma diferença importante: na CBOD5, a nitrificação deve ser inibida.

O laboratório precisa assegurar:

• utilização do inibidor previsto;
• concentração adequada;
• distribuição uniforme entre os frascos;
• identificação correta do ensaio;
• registro do reagente ou do produto utilizado;
• aplicação do critério de GGA compatível;
• separação clara entre resultados de DBO5 e CBOD5.

DBO5 e CBOD5 não devem ser tratadas como determinações intercambiáveis. O artigo DBO5 e CBOD5: diferenças e quando utilizar cada ensaio explica como a nitrificação modifica a parcela da demanda de oxigênio avaliada.

Checklist para o controle de qualidade da DBO

Antes de liberar o lote, verifique:

• A amostra foi recebida e armazenada conforme o procedimento?
• O prazo entre coleta e análise foi atendido?
• O pH e o cloro residual foram avaliados?
• A água de diluição foi preparada com os nutrientes necessários?
• O branco apresentou depleção aceitável?
• A semente foi preparada nas condições estabelecidas?
• O controle da semente apresentou atividade adequada?
• O fator de correção foi calculado corretamente?
• O GGA atendeu ao limite adotado?
• O medidor de oxigênio dissolvido foi calibrado?
• As leituras foram realizadas de maneira uniforme?
• A incubação permaneceu no tempo e na temperatura previstos?
• Pelo menos uma diluição atendeu aos critérios?
• Os resultados das diluições válidas foram coerentes?
• As duplicatas atenderam ao limite de repetibilidade?
• Os cálculos e fatores de diluição foram revisados?
• Todos os desvios foram registrados e avaliados?
• Os dados permitem reconstruir integralmente a análise?

Perguntas frequentes sobre controle de qualidade na análise de DBO

Quais são os principais controles da DBO5?

Os principais são o branco da água de diluição, o controle da semente, o fator de correção da semente, o GGA, as diluições válidas, as duplicatas, a calibração do sistema de oxigênio dissolvido e o controle da incubação.

Qual é o limite do branco da água de diluição?

Em procedimentos baseados no Standard Methods 5210 B, é frequentemente adotada uma depleção inferior a 0,2 mg/L após cinco dias. O laboratório deve confirmar o critério estabelecido no método e em seu procedimento.

Para que serve o controle da semente?

Ele determina a atividade do inóculo e a parcela do consumo de oxigênio que precisa ser descontada do resultado da amostra.

O que é o SCF na análise de DBO?

SCF é o fator de controle ou correção da semente. Ele representa a contribuição do inóculo para a depleção de oxigênio no frasco da amostra.

Para que serve o GGA?

A solução de glicose e ácido glutâmico verifica o desempenho conjunto da água de diluição, da semente, dos nutrientes, da incubação e da execução do ensaio.

Qual é o valor aceitável para o GGA?

Para a DBO5 convencional, muitos procedimentos utilizam 198 ± 30,5 mg/L. Contudo, o limite deve ser confirmado no método, no programa de acreditação e no procedimento operacional do laboratório.

Quando uma diluição da amostra é válida?

Nos procedimentos mais utilizados, a diluição deve apresentar depleção mínima de 2,0 mg/L e manter pelo menos 1,0 mg/L de oxigênio dissolvido ao final da incubação. O critério aplicável deve ser confirmado no método adotado.

Um GGA aprovado garante que todas as amostras estão corretas?

Não. A amostra pode conter toxicidade, cloro residual, pH inadequado ou outras interferências que não estão presentes no padrão.

O uso de PolySeed elimina o controle da semente?

Não. Mesmo sendo um inóculo padronizado, o PolySeed consome oxigênio e sua contribuição deve ser determinada e corrigida.

O resultado pode ser liberado se um controle falhar?

A falha deve ser investigada e seu impacto sobre o lote precisa ser avaliado conforme o procedimento do laboratório. Não é adequado liberar automaticamente os resultados sem documentar essa análise.

Padronize o inóculo e fortaleça o controle da DBO

A confiabilidade da análise de DBO depende do acompanhamento de todo o sistema analítico.

Branco, semente, GGA, diluições, oxigênio dissolvido e incubação fornecem evidências diferentes e complementares. Avaliados em conjunto, esses controles ajudam o laboratório a identificar desvios antes que um resultado inadequado seja utilizado em decisões ambientais ou operacionais.

Para laboratórios que precisam adicionar semente à DBO5, o PolySeed oferece uma fonte comercial padronizada de culturas microbiológicas. Quando o parâmetro determinado é a CBOD5, o PolySeed NX combina o inóculo com um aditivo para controle da nitrificação.

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Consulte a equipe técnica da CMS para esclarecer dúvidas de aplicação e solicitar uma proposta comercial.